در مقاله حاضر، تلاش هایی برای بهینه سازی متغیرهای فرایند فیزیکی یعنی؛ PH، دما و سرعت همزدن  برای افزایش تولید پلی هیدروکسی بوتیرات (PHB) در کشت دسته ای توسط آلکالی ژن های Sp صورت گرفته است، که بعنوان پیش ماده برای تولید پیش سازهای بیوپلاستیک ها (PHB) بکار می رود. انتخاب جریان توسط روش رنگ آمیزی بادوام با استفاده از رنگ نیل آبی A انجام می گیرد. در کشت و صنعت محصولات، ملاس نیشکر و اوره به عنوان منبع کربن و نیتروژن برای تولید PHB مورد استفاده قرار گرفت. بهینه سازی متغیرهای فرآیند فیزیکی توسط طراحی قابل گردش کامپوزیت مرکزی (CCRD) با استفاده از کارشناس نرم افزار طراحی (DX 8.0.6) انجام شد. لرزش فلاسک کشت تحت شرایط مطلوب یعنی، دمای 34.5 درجه سانتیگراد،  pH 6.54 و سرعت همزدن 3.13 هرتز، دارای عملکرد بخش PHB 76.80٪ در بستر ملاس خشک است و در حدود 98٪ با عملکرد درصد پیش بینی شده 77.78٪ شباهت نشان داد. کشت دسته ای بیشتر در 7.5 L در مقیاس راکتوری آزمایشگاه (حجم کارکردی: 5.6 L) تحت شرایط بهینه حداکثر زیست توده سلولی gL-10.511را با PHB با محتوای gL-10.48.8، پس از 48 ساعت تخمیر ایجاد می نماید . مطالعه مقیاس بیو راکتوری دارای حداکثر بازده PHB ، (YP / X) و بهره وری 0.78 و gL-1 h0.19 بود که بیشتر از گزارش های قبلی تحت شرایط یکسان است. خواص PHB توسط FTIR انجام شد.

کلیدواژه: آلکالی ژن های sp، متغیرهای فرایند فیزیکی، بهینه سازی، تولید PHB، خصوصیات

شناسايي ريزماهواره ها در بين پشیز بالان بسيار ضعيف بوده است.  ما نشان داده ايم كه انجام ISSR امكان پذير است و كاربردپذيري آنها در تغيير specific-inter و intra در برخي جمعيت هاي شب پره را نشان خواهيم داد. 

پشیز بالان نسبت به تغييرات آب و هوايي و زيستگاه حساس هستند. ما جمعيت هاي شب پره را در زيستگاه هاي طبيعي و توزیع شده در کوه های پیرنه كشور فرانسه آناليز مي كنيم. ما سعي كرديم كه به يك روش چندبعدي قابل استفاده در تعیين گونه ها دست يابيم تا بدين ترتيب تفاوت هاي ژنتيكي جزئي در ژنوم هستۀ بيد را نشان دهيم. 

در مقايسه با ساير حيوانات، مطالعات ريزماهواره اي نسبتا كمي بر روي  پشیز بالان انجام گرفته است.  تنها چند مطالعه ايت كه بر روي ISSR كار كرده اند. يكي از دلايل آن ان است كه تصور ميشده  كه ريزماهوارها در پشیز بالان وجود ندارد يا اينكه به ندرت يافت مي شوند.  بااينحال، Meglecz و Solignac(1998) و Happer و ديگران مكان تكرارها را در ريزماهواره هايی حشرات با موفقيت تعيين كردندn (CA ). 

ما دريافتم كه :1) پرايمر n(CA ) بيشترين پروفايل هاي اطلاعات را ارائه مي دهد 2) پروفايل هاي DNA بين گونه ها اساسا با هم فرق دارد 3) از مقايسۀ پروفايل هاي ISSR مي توان براي مطالعۀ تغيير intra و inter با موفقيت استفاده كرد. 

چالش عمده ایی که بیولوژیست ها در رابطه با رشد ونمو گیاه با آن مواجه اند به درک مکانیسم های بر می گردد که رشد و نمو کلی سیستم های پیچیده را کنترل می کنند. مطالعۀ حاضر بر مکانسم هایی متمرکز است که تفکیک، رشد و معماری سیستم های ریشه را شکل میدهند. نقش نشانۀ رشۀاصلی  یعنی سیتوکینن (CK) به همراه نقش نشانۀ شاخه یعنی اکسین( ایندول-3- استیک اسید، IAA) و واکنش آنها تجزیه و تحلیل خواهد شد (Coenen و Lomax 1997، Bangerth و دیگران 2000؛ Nordstro¨m و دیگران 2004؛ Woodward و Bartel 2005). ستوکینن ها مولکول های نشانه دهی هورمونی هستند که نقش اساسی در تنظیم سیتوکینن ها، رشد و نمو در گیاهان ایفا می کنند. در یک گیاه دست نخورده، سلول های زندۀ ریشه و شاخه هر دو قادرند CKها و همچنین هورمون های نشانه دهی اکسین را تولید کنند(Miyawaki و دیگران 2004، Nordstro¨m و دیگران، 2004؛ Aloniو دیگران 2005؛ Tanaka و دیگران 2005). بااینحال،  با وجود اینکه  CK و IAA هر دو در ریشه و شاخه تولید می شوند (Nordstro¨m و دیگران 2004، Ljungو دیگران 2005) اما تولید این نشانه های هورمونی عمده به صورت تصادفی رخ نمی دهد. بلکه توسط مکان سلولهای سنتز کننده در بدنۀ گیاه و مرحلۀ نموی آنها تنظیم میشود و تحت تأثیر شرایط محیطی می باشد. اندام های جوان شاخه ، جایگا های اصلی تولید IAA هستند (Aloni و دیگران 2003،2006)، در حالی که نوک های ریشه جایگاه اصلی سنتز CKهستند ( Aloniودیگران 2004،2006).

نشانه ها از جایگاه های تولید هورمون از طریق مسیرهای ساختاری خاص و توسط مکانیسم های مختلف حرکت می کنند تا تفکیک و نمو گیاه را تنظیم کنند (Aloni 2004، Aloni و دیگران 2005). عدم بیان ایزوپنتنیل ترانس فراز (IPT ) در مریستم های رأسی شاخه(Miyawaki و دیگران 2004) با نبود CK آزاد در مریستم های رأسی شاخۀ جوانه های 3 روزۀ آرابیدوپسیس تالیانا (Aloni و دیگران 2004) همخوانی سازگاری داشت و نبود آن در جوانه های جانبی گیاهان مسن تر که تحت شرایط تقریبا بدون تعرق رشد یافته بودند (Aloni و دیگران 2005) نشان می دهد که جوانه های رأسی شاخه ، ظاهرا جایگاه اصلی سنتز CK نیستند (شکل 1).

مطالعۀ حاضر اولین گزارش دربارۀ تشکیل کشت های کالوزگیاهکی از بافت جوانه، احیای گیاهان از طریق گیاهک زایی سوماتیک و پیشرفت سیستم احیا ازپروتوپلاست به گیاه با استفاده از سه گونۀ وحشی Cyclamen یعنی Cyclamen graecum Link،Cyclamen mirabile Hildebrand و Cyclamen trochopteranthum Schwarz می باشد ( واژه مترادف Sprenger Cyclamen alpinum hort. Dammann ex). امکان تشکیل کالوز گیاهک و احیا از طریق گیاهک زایی سوماتیک برای هر گونه شدبدا به ژنوتیپ وابسته بود. از 0.5 g کالوز، حدود 1461 گیاهک سوماتیک در موقعی  C. mirabile تشکیل شد. محیط های کشت با غلظت های متفاوتی از تنظیم کننده های رشدی گیاه، CaCl2 و زغال چوب فعال شده تأثیر قابل توجهی بر شکل گیری گیاهک در گونه داشتند. حدود 1.4×106 پروتوپلاست از 1 g تعلیق سلول C. graecum جدا شدند. پاسخ های رشدی گوناگون پروتوپلاست ها در دو عامل تعبیه کننده یعنی آگارز و آلگینات برای گونه های مختلف Cyclamen مشاهده شد. این ویژگیهای رشدی خاص به عنوان نشانگر گزینش برای آزمایشات ترکیبی(fusion) در آینده استفاده شدند. برای هردو سیستم کشت پروتوپلاست، گیاهک هایسوماتیک احیا شدند، برای plantlets پرورش داده شدند و با شرایط گلخانه ایی سازگار شدند.

کلید واژه ها : آگاروز، آلگینات، Cyclamen alpinum، Cyclamen graecum، Cyclamen mirabile، گیاه سیکلامن، جداسازی پروتوپلاست، تکثیر رویشی

دستۀ (Cyclamen Myrsinaceae) شامل تقریبا 22 گونه میشود (Grey-Wilson،2003) که عمدتا در کشورهای اطراف و آبگیر مدیترانه ایی پراکنده هستند. برخی گونه ها از قرن هجدهم در کشورهای اروپای غربی کشت شده اند. اما تنها گونه ایی که اهمیت اقتصادی جهانی داشته Cyclamen persicum Miller بود. استثنائاتی وجود دارد و آن این که برخی گونه ها مانند C. coum Miller و C. hederifolium Aiton بندرت کشت میشوند. زیرا رشد آنها کند است و ملزومات کشت آنها بسیار ناشناخته است. Cyclamen graecum Link در قسمت هایی از یونان و جزایر آن یافت میشود. Cyclamen mirabile Hildebrand و همچنین  Cyclamen trochopteranthum Schwarz (مترادف Cyclamen alpinum hort. Dammann ex Sprenger) بومی منطقۀ جنوب غرب آنتالیا در ترکیه می باشد (Grey-Wilson، 2003). سه گونه به دلیل برخی ویژگی های باارزش که در کالتیوارهای C. persicum وجود ندارد، انتخاب شدند.

در این مقاله اقداماتی در جهت انتخاب ژنوتیپ های مسئول در آزمایشگاه و ترکیب پروتوپلاست های  جدا شده براسیکا کاریناتا و براسیکا ناپوس تولید کنندۀ خطوط (BC DH Dodolla، BC D-1، BC DH-6، و BN OP-1, BN-SL-03/04) بدست آمده از آزمایشات قبلی انجام شد. ترکیب سه غلضت متفاوت PEG  (20%،25% و 30%) و دو دورۀ متفاوت تیمار (15و 20 دقیقه) آزمایش شد. ما در آزمایشات خود، ژنوتیپ های متعددی ( براسیکا کاریناتا DH BC-6  و DH BC-1، براسیکا ناپوس DH OP-01) با قابلیت  احیاء رضایت بخش کالوز کشت های پروتوپلاست را شناسایی کریم. ترکیب درست و کامل غلضت وزمان  تیمار PEG، فراوانی ترکیب پروتوپلاست بین ژنوتیپ های مورد استفاده را تعیین کرد. با وجود اینکه طبق ارزیابی ها محلول PEG 30% بهترین غلظت را داشت اما مقدار زیاد multifusantها که در کاربردهای عملی لزومی ندارد، با تیمار طولانی تر PEG  به طور ویژه در ظروف پتری مشاهده شد. در کل، 25% PEG به همراه 20 دقیقه تیمار، اندازۀ ترکیب رضایت بخش بود و میزان دوام پذیری نیز خوب بود. 

کلیدواژه: براسیکا کاریناتا، براسیکا ناپوس، کشت پروتوپلاست، ترکیب پروتوپلاست

مقدمه:

دستۀ براسیکا شامل گونه های زراعی متعدد می باشد که درسرتاسر دنیا از ارزش اقتصادی بالا برخوردارند. بنابراین، این محصولات با استفاده از روش های متعارف، نه تنها پرورش دهندگان را به خود جلب میکنند بلکه کسانی که با روش های بیوتکنولوژی نیز سروکار دارند به این محصولات توجه نشان می دهند. در سالهای اخیر، اقدامات اساسی در زمینۀ تحقیق بر روی براسیکا بیشتر بر کاربرد تکنولوژی کشت بافت برای بهبود و ارتقاء محصول متمرکز بوده است. روشهای کشت ریزهاگ و کشت پروتوپلاست برای دستکاری ژن خارجی به وفور انجام می شود . زیرا از این طریق می توان تنوع ژنتیکی را گسترش داد.

اين مقاله مختص كساني است كه براي بررسي فرضيه ها از تيمار (علف كش، آتش، كشت، ژنوتيپ، مادۀ ارگانيك، كود و غيره ) بهره ميبرند و كساني كه بعد از نمونه گيري از جمعيت هاي طبيعي مختلف، فرضيۀ صفر را ناديده ميگيرند. علاوه بر اين، براي انتخاب هاي عملياتي مي توان از اين مقاله استفاده كرد. اين پژوهش براي كساني كه از جمعيت هاي طبع نمونه گيري مي كنند و سپس فرضيه ها را فرمول بندي مي كنند مناسب نيست(نتيجه گيري ارائه نمي شود). جنگلبانان حرفه اي به اطلاعات علمي صحيح نياز دارند تا بتوانند تعيين كنند كه چه نوع پايه و چه مقدار كود براي گياه استفاده كنند و چه موقع به كار كم پشت سازي بپردازند. متاسفانه، برخي پژوهشگران آزمايشان بدون رونوشت و يافته هاي گزارشي مبني بر رونوشت كاذب ارائه ميدهند. كساني كه از رونوشت كاذب به منظور رد فرضيۀ صفر با خطر خطاي آماري نوع 1 ميشوند. در برخي زمينه ها،  از هر چهار مقاله بيش از 1 مورد به رونوشت كاذب ميپردازند(Hurlbert 1984،  Heffnerو ديگران 1996). با وجود اينكه برخي دانشجويان تحصيلات تكميلي با مفهوم رونوشت كاذب مواجه مي شوند (Kolb و ديگران 2001) اما ساير دانشجويان اين شانس را ندارند. هدف از ان مقاله (قسمت اول اين مقالعۀ دو بخشي) پرداخت به موضوع زير است:

رونوشت كاذب زماني رخ مي دهد كه تيمارها رونويس نمي شوند اما آزمون t يا ANOVA (آناليز واريانس) در هر صورت انجام ميگيرد با فرض اينكه زيرنمونه ها (sub-samples) (يا دربرخي موارد درخت هاي فردي) همانند رونوشت هستند. اين امر منجربه استفاده از تعداد ناصحيح درجات آزادي خطا مي شود. عامل عمده ايي كه منجر به رونوشت كاذب ميشود در تعريف واحد آزمايشي صحيح با شكست مواجه مي شود. علاوه بر اين، برخي ويراستارهاي مجلات الزامي به استفاده از جداول ANOVA در دست نوشته ها نمي بينند. در نتيجه، بازبين گر متوجه نيست كه ضريب خطا شامل 13 درجۀ آزادي است يا 2841 درجۀ ازادي است. بازبين گرهايي كه معمولا آزمايشات بدون رونويسي را ناديده ميگيرند، غالبا به غلط تصور مي كنند كه آناليز آماري (كه شامل رونويسي كاذب است) معتبر است. بعداز انكه اندازه هاي احتمال با استفاده از رونويسي كاذب منتشرشد،  مورد شك قرار ميگيرند.

جنگل های هیرکانیان از تالش در کشور جمهوری آذربایجان گسترده میشود و دامنه های شمالی کوههای البرز در شمال ایران در استان های گیلان، مازندران و گلستان را پوشش میدهد.  پوشش گیاهی اساسا از جنگل های برگ ریز تشکیل می دهد. گونه های گرمادوست Arcto-Tertiary  مانند Parrotia persica، Gleditsia caspica،  Zelkova carpinifolia  و Pterocarya fraxinifolia پوشش گیاهی در ارتفاعات کم را تشکیل می دهد. تنوع گونه های درختی در ارتفاعات زیاد افزایش میابد . در این ارتفاعات جنگل های نیمه آلپی (subalpine) و خلنگ زارهای  کم بوتۀ مرز جنگل جای خود را به علفزارهای آلپی در دامنه های شمالی و جلگۀ thorn-cushion ایران و تورانیان رو به قله ها و دامنه های شمالی میدهند.  تا کنون 3234 گونه متعلق به 856 دسته و 148 خانوادۀ گیاهان آوندی از استان های شمالی ایران و تالش جمهوری آذربایجان گزارش شده است. انواع اصلی پوشش گیاهی منطقۀ جنگلی هیرکانیان شامل موارد زیر می شود: 1) پوشش گیاهی تپه ماسه ایی در امتداد سواحل دریای خزر 2) اجتماع علفزارهای پوشیده C4 بر روی چینه های صخره ایی 3) پوشش گیاهی آبی بر روی تالاب ها 4) جنگل های دره ایی و رودخانه ایی 5) جنگهای برگریز پست و آبرفتی 6) جنگل های برگریز کوهستانی و کوهپایه ایی 7) جنگلهای برگریز دامنه ایی (Quercusmacranthera) 8) درختزارها و خلنگزارهای انتقالی و وراثتی 8) درخت زارهای Cupressus sempervirens و Thuja orientalis 9) جنگل های سرو کوهی 10) چمنزارهای آلپی و نیمه آلپی 11) جلگۀ کوهستانی پوشیده با گونۀ thorn-cushion و گیاهان خشک زی 12) اجتماعات صخره ایی 13) اجتماع گیاهان شوره زی 14) جلگۀ Artemisia spicigera و بیابان شبیه تپه 15) رستنگاه های میان مواد پوسیده و فاسد 16) مناظر فرهنگی و جنگلهای مصنوعی.

شواهد بدست آمده از مطالعات انجام شده بر روی سلسله خاک های بادآورده / palaeosol، تغییرات طولانی مدت سطح دریای خزر ورسوبات دریاچه ایی/ذغال کک در شمال ایران نشانگر سابقۀ پوشش گیاهی و جوی منطقۀ جنوب خزر می باشد. مطابق این بررسی ها، در طی اوایل دوران پلیستوسن، حداقل قسمت هایی از منطقه تحت پوشش گیاهی جلگه مانند بود و آب و هوا نسبتا از آب و هوای فعلی گرمتر بود. علاوه بر این تصور میشود که شمال ایران منطقۀ وسیعی بوده که تجمع گرد و غبار و تشکیل خاک های باد آورده در طی دوران یخ زدگی پلیستوسن افزایش داشته و این رویداد همزمان با تغییرات عمدۀ آب و هوا در جنوب شرقی اروپای مرکزی و آسیای مرکزی است. این مطالعات علاوه بر این تغییرات قابل توجه جوی در شمال کشور را نشان می دهد که آب و هوای سرد و خشک در این منطقه شرایط گرم و مرطوب در طی یخبندان پلیستوسن تغییرکرد. 

کل محتویات فنولی و فلاونوئید عصاره های مختلف Papaver rhoeas L. بررسی و آزمایش شد.   محتوی بالای کل ترکیبات فنولی (9.  73 - 19.  91 mg GAE/g گلبرگ های تازه) و کل فلاونوئیدها (7.  904 - 11.  45 mg QE/g گلبرگ های تازه) آزمایش شد. رنگدانۀ قرمز موجود در گل های P.   rhoeas L.   ناشی از آنتوسیانین ها بود که به عنوان آنتی اکسیدان های طبیعی عمل می کند. محتوی آنتی سیانین های موجود در عصاره بررسی شده بسیار یکپارچه میباشد و از 4.  72 تا 5.  193 mg سیانیدین-3-o- گلوکوزید /g گلبرگ های تازه می باشد. فعالیت آنتی اکسیدانی عصاره های مختلف با استفاده از روش طیف سنجی و بوسیلۀ قابلیت  scavenge 1، 1- دی فنیل-2- پیکریل هیدرازیل (DPPH) توسط عصاره آزمایش شد. تمام عصاره های آزمایش شده فعالیت scavenging قوی- یعنی بیش از 80%- بر علیه رادیکال های DPPH نشان دادند. کل محتویات فلاونوئیدی و فنولی با درصد scavenging فعالیت سنجش DPPH ( ضریب همبستگی برآورد شده به ترتیب R2 = 0.  965  و 0. 752) ارتباط داشتند. عصارۀاتانول P. rhoeas L. ،  فعالیت آنتی میکروبی بر علیه مخمر Candida albicans و تمام باکتریهای آزمایش شده  به جزء Bacillus subtilis را نشان داد. این مقاله نشان می دهد که عصاره های بررسی شدۀ گیاه P.   rhoes L.   به عنوان عاملان آنتی میکروبی و آنتی اکسیدانی کاربرد بالقوه می توانستند داشته باشند.   

کلید واژه: Papaver rhoeas L. ، محتوی فنولی، محتوی فلاونوئید، فعالیت آنتی اکسیدان، فعالیت آنتی باکتریایی

مقدمه:

Papaver rhoeas L.  (Papaveraceae) یک گیاه یکسالۀ بومی است که در نقاط گوناگون دنیا وجود دارد. در طب سنتی تا داروهای ساختگی پیشرفته، عصاره های این گیاه برای درمان طیف وسیعی از بیماریها مانند التهاب، اسهال، اختلالات خواب و هم چنین سرفه، تسکین درد و کاهش علائم برگشت اعتیاد شبه افیونی مورد استفاده قرار گرفته است. همچنین ادعا میشود که گیاه P.   rhoeas اثر مسکن، مخدری و ملینی دارد( زارگاری،  1994).

اهداف این مقاله، بررسی اثربخشی فراسونوگرافی در نظارت فعالیت تخمدان با بررسی رشد کیسه ای و رگرسیون و بررسی رابطه ی بین اندازه گیری های جسم زرد (CL) و غلظت های پروژسترون پلاسما (P4) و مقایسه ی خطوط ژنتیکی تولید بالا و پایین گاوهای شیرده با در نظر گرفتن هورمون رشد گاو نر درونی (bST) و تاثیرات تولید شیر روی الگوهای موج کیسه ای، سایز و تعداد فولیکول ها، رشد CL، و غلظت های پلاسمای P4 در طول سیکل فحلی نظارت شد توسط فراصوت بودند. هفده گاو Holstein شیرده چند شکم زاييده (چندقولوزا) به دو گروه تقسیم بندی شدند، گروه با تولید کم (گروه کنترل n=9) و گروه با تولید بالا (گروه انتخابی، n=8). تخمدان ها روزانه بعد از سکل فحلی تا زمان سیکل فحلی بعدی با فراسونوگرافی برای نظارت داینامیک های فولیکولی و زرده ای مورد بررسی قرار گرفتند. نه مورد از 17 سیکل فحلی که در این آزمایش مورد بررسی قرار گرفتند، دو موج فولیکولی با سیکل فحلی به طول 22.2±0.4 روز با فولیکول تخمکی داشتند، در حالیکه 8 سیکل سه موج فولیکولی با طول 24.5±0.7 روز با فولیکول Graffian داشتند. میانگین طول سیکل فعلی دو موجی به میزان قابل توجهی کوتاه تر از سیکل فحلی سه موجی بود. رابطه ی مثبتی بین ضرب های طول ها و عرض ها، قطرها و میانگین های طول ها و عرض های CL و میانگین غلظت های پلاسما P4 وجود ارد. در نتیجه، فراسونوگرافی ابزار موثری برای نظارت فولیکول ها و CL در گاوهای شیری می باشد. بعلاوه، هیچ اختلافی غیر از دومین فولیکول بزرگتر در گاوهای انتخاب شده از نظر شیری یافت نشد. 

کلیداواژه: گاو، فولیکول، جسم زرد، پروژسترون، سوماتوتروپین (هورمون رشد) گاو نر، فراسونوگرافی، تولید مثل، تولید شیر. 

مقدمه:

تجهیزات فراصوتی آرایه ی خطی زمان واقعی ارسالی برای بررسی اندام های تناسلی در تولید مثل گاو نر در رابطه با ارزیابی اندام های تولید مثل و درک فیزیولوژی تولید مثل به عنوان ابزار تشخیص اخیر مورد استفاده قرار گرفتند. دستگاه فراصوت با ارسال و دریافت موج های صوتی فرکانس بالا برای تولید تصاویر مبتنی بر میزان بازتاب شده و ذب شده توسط بافت هایی با چگالی های متعدد کار می کند.

هورمون جیبرلین (GA) نقش مهمی در تعدیل و مدولۀ فرآیندهای گوناگون در تمام رشد و نمو گیاه ایفا می کند. در سال های اخیر، پیشرفت قابل توجهی در زمینۀ شناسایی مولفه های نشانه دهی GA بالادست و عوامل trans و cis-acting که ژن های واکنش ده به GA پایین دست را در گیاهان عالی تنظیم می کنند انجام شده است. ظاهرا GA مسیر نشانه دهی خود را ازطریق القای پروتئولیز عوامل مانعی GA (پروتئین های DELLA) ابراز می کند. شواهد جدید نشان می دهد که پروتئین های DELLA هدف فروافت کمپلکس SCF لیگاز یوبیکیتن E3 از طریق مسیر پروتوزئوم یوبیکیتن- 26S می باشد.

واژه های کلیدی:ژن های واکنش ده به GA، انتقال نشانۀ هورمون، کمپلکس  SCF، پروتئین های DELLA، GARC

جیبرلین های بیواکتیو (GAها) هورمون های گیاهی هستند که باعث رشد ساقه و برگ می شوند. GAها در برخی گونه ها باعث جوانه زنی بذر و تعدیل زمان گلدهی و رشد گلها، میوه ها و بذر می شوند. دریافت GA و مسیر انتقال نشانه ، نشانۀ GA را به تغییراتی در بیان ژن و ریخت شناسی گیاه تبدیل می کند. با وجود اینکه پذیرندۀ GA شناسایی نشده است اما، به تازگی پیشرفت های قابل توجهی در زمینۀ شناسایی مولفه های نشانه دهی GA بالادستی عوامل ترانس و cis-acting که ژن های واکنش دهنده به GA پایین دست در گیاهان عالی را تنظیم می کنند انجام شده است.